欧美丰满少妇猛烈进入A片蜜桃,真实露脸农村妇女23p http://m.urbisorbis.com BioMarker Mon, 03 May 2032 15:33:46 +0000 zh-CN hourly 1 https://wordpress.org/?v=4.7.22 http://m.urbisorbis.com/wp-content/uploads/2020/04/cropped-512-512-32x32.png RNA – 百邁客生物 http://m.urbisorbis.com 32 32 RNA速率分析方法推薦 http://m.urbisorbis.com/archives/28929 Mon, 09 Jan 2023 08:18:11 +0000 http://m.urbisorbis.com/?p=28929 RNA 速率這個概念最初是在2018年提出的,可以通過測序結(jié)果與mRNA剪切動力學相關(guān)聯(lián),利用新轉(zhuǎn)錄的未剪接的前體 mRNA 和成熟的剪接 mRNA 可以在常見的scRNA-seq、stRNA-seq 流程中區(qū)分的事實,可以恢復定向動態(tài)信息,從而探索方向軌跡的演化。目前RNA速率分析可廣泛應(yīng)用于免疫微環(huán)境、發(fā)育模式、遺傳進化等方向。那么今天我們一起來學習一下RNA速率分析流程及方法有哪些。

RNA速率分析1、獲得重復序列注釋文件

軟件依賴:RMBlast、TRF ——> conda 安裝即可

數(shù)據(jù)依賴:Repbase數(shù)據(jù)庫

鏈接:https://pan.baidu.com/s/1F4E5-6XaVni1I_S97TEIDg 提取碼:zq7t

下載后解壓得到一個Libraries的文件夾

Repeatmasker下載:wget http://www.repeatmasker.org/RepeatMasker-open-4-0-6.tar.gz

下載后解壓,將第二步 數(shù)據(jù)依賴 中Libraries文件夾下的內(nèi)容拷貝到Repeatmasker目錄下Libraries文件夾中

cp Libraries/* /path/to/Repeatmasker/Libraries/

安裝可參考以下教程:

基因組重復序列檢測:RepeatMasker的安裝及使用可自行搜索安裝

運行Repeatmasker:

/share/nas1/guochao/biosoftware/RepeatMasker/RepeatMasker -pa 60 -species “Mus musculus” -poly -html -gff -dir repeat /path/to/genome.fa

-species : 物種拉丁名

-dir : 輸出結(jié)果目錄,需提前創(chuàng)建好!

RNA速率分析2、構(gòu)建loom文件

安裝velocyto:pip install -i https://pypi.tuna.tsinghua.edu.cn/simple velocyto

具體安裝方法可自行搜索

處理bam文件

perl腳本:

鏈接:https://pan.baidu.com/s/1F4E5-6XaVni1I_S97TEIDg? ? 提取碼:zq7t

perl am_add_flag.pl <BSTViewer_project/subdata/L1_heAuto/barcodes.tsv.gz> <sample/barcode.tsv> <BSTViewer_project/level_matrix/level_1/barcodes_cluster.tsv.gz>

:BSTMatrix輸出結(jié)果 01.fastq2BcUmi目錄下xxx.bc_umi_read.tsv.id

: BSTMatrix輸出結(jié)果05.AllheStat目錄下BSTViewer_project/subdata/L1_heAuto/barcodes.tsv.gz

<sample/barcode.tsv>: BSTMatrix輸出結(jié)果樣本名稱目錄下barcode.tsv文件

:BSTMatrix輸出結(jié)果05.AllheStat目錄BSTViewer_project/level_matrix/level_1/barcodes_cluster.tsv.gz

: BSTMatrix輸出結(jié)果 03.Umi2Gene 目錄下 xxxAligned.sortedByCoord.out.bam

: 輸出路徑

運行velocyto:

velocyto run -o ./ -m /path/mouse/mus_repeat.gtf new.bam ../mouse/genes.gtf

-o : 輸出路徑

-m : 重復序列注釋文件(第一步獲得)

R轉(zhuǎn)化loom文件為h5ad文件

library(Seurat)

library(SeuratWrappers)

library(SeuratDisk)

loom_data bm bm[[“RNA”]] bm bm bm bm bm

DefaultAssay(bm) <- “RNA”

SaveH5Seurat(bm, filename = “test.h5Seurat”)

Convert(“test.h5Seurat”, dest = “h5ad”)

scvelo RNA速率分析

adata = scv.read(‘/path/test.h5ad’)

scv.pp.filter_and_normalize(adata, min_shared_counts=20, n_top_genes=2000)

scv.pp.moments(adata, n_pcs=30, n_neighbors=30)

scv.tl.velocity(adata)

scv.tl.velocity_graph(adata)

scv.set_figure_params(dpi=300)

scv.pl.velocity_embedding_stream(adata, basis=”umap”, size= 10, alpha=0.6, color=”seurat_clusters”)

RNA速率分析

RNA速率分析

]]>
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